纳米抗体定制

纳米抗体定制

1993年,比利时布鲁塞尔自由大学免疫学家Hamers-Casterman教授以及他的同事们在骆驼(骆驼科,后来研究证实也包括 单峰骆驼和羊驼)的血清中发现了一种与传统抗体结构不同的新型抗体,这种抗体仅仅由两条重链构成,被称为重链抗体(heavy-chain antibody, HCAb)。重链抗体的重链的可变区称为VHH(variable domain of heavy chain of heavy-chain antibody),通过体外重组表达制备的VHH 分子质量仅仅为15kDa, 是传统抗体的十分之一左右,是抗原结合片段(scFV,VH-VL)的二分之一左右,因此被称为纳米抗体(nanobody, Nb)。

由于没有轻链,纳米抗体仅有3个属于重链的抗原识别区域(CDRs 区)。为了弥补缺少的轻链CDRs的生物学活性,纳米抗体在 CDR3部分增加了氨基酸长度(16~18个氨基酸残基,对应的传统抗体的CDR3有8-15个氨基酸),以增加CDR的多样性和特异性。另外,纳米抗体的 CDR3 区域可形成一个大的暴露的凸环,像“手指”一样延伸到抗原的缝隙或者裂口中,可以接触到传统抗体不能接触的抗原表位。CDR3凸环中的一个半胱氨酸还可以与CDR1 或FR2 的 45 位点的半胱氨酸形成二硫键,可使纳米抗体的生物结构相对稳定,大大降低纳米抗体与抗原结合所需能量,使得高亲和力的纳米抗体的获得较容易。

我们的优势

更好的特异性和亲和力

更低的免疫原性

更好的稳定性和可重复性



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服务内容


纳米抗体的筛选和制备

纳米抗体基因文库的构建

抗原特异的纳米抗体可以通过免疫库、天然库或合成库产生,其中免疫库的构建常用的纳米抗体开发技术。用纯化的靶抗原对羊驼进行免疫,免疫成功后在羊驼血液中提取包含成熟B细胞的淋巴细胞。抽提淋巴细胞的RNA并反转成cDNA文库,利用特殊设计的引物在cDNA文库中再次进行PCR扩增,得到特异的基因片段;随后将特异的基因片段拼接重组在噬菌体载体上,并转染大肠杆菌,最终完成纳米抗体基因文库的构建。

特异性抗体的筛选

将靶点抗原或者带有抗原的物质直接/间接的固定在固体载体上,随后加入噬菌体文库和抗原相互作用。作用一段时间后阳性噬菌体会和抗原结合,用洗涤液洗涤固体载体表面,可以将未结合或非特异结合的噬菌体洗去。随后用强酸或者强碱破坏固体载体上抗原和阳性噬菌体的结合,从而得到阳性噬菌体溶液。一般重复进行2-3轮的筛选即可获得符合开发要求的纳米抗体克隆。

纳米抗体的生产制备

获得符合要求的抗体克隆后需要进行抗体的大规模生产制备。纳米抗体的生产制备是DNA转录到mRNA然后翻译成蛋白的过程。由于抗体具有复杂的结构,因此在表达体系中需要复杂的细胞器来完成正确的表达、折叠和加工。目前,在工业界有一系列成熟的表达体系可用于抗体表达,不同的表达体系之间各有优劣势差异。抗体设计的最优功能表达和纯化是决定它们实现应用命运的关键因素,因此选择合适的表达体系是获得最大收益的重要环节。

哺乳动物细胞系由于免疫原性低,且其细胞器可提供最优的折叠、分泌和翻译后修饰,是治疗性抗体的首选表达系统,但同时存在生产成本高、技术难度大等缺陷;大肠杆菌表达体系由于其便利的生产和操作、快速的生产周期以及成熟的平台体系最受欢迎,然而,由于氧化氛围和折叠能力的限制,大肠杆菌不能表达具有复杂结构和富含二硫键的重组抗体;酵母是另一个普遍使用的微生物表达宿主,其结合了原核表达系统的优势(周期短、成本低、操作简单)和真核表达系统的优势(正确的折叠、修饰和分泌),使得它成为最受欢迎的可表达全长IgG或者其他抗体形式的宿主。还有其他一些系统可用于表达重组抗体,比如丝状真菌、藻类、原虫、昆虫细胞、转基因植物和动物,其中对转基因植物和动物的研究处于相对初始的阶段,需要进一步的深入研究。

对于纳米抗体,由于其结构简单,水溶性较好,因此可以利用成本比较低的细菌表达系统和酵母表达系统进行大量生产。例如,比利时Ablynx公司建立了成熟的毕赤酵母表达和纯化工艺。纳米抗体在哺乳动物细胞系中生产鲜有报道,因为生产成本的昂贵会限制该体系的发展。在植物和动物体内进行纳米抗体生产也有大量的研究报道,跟传统抗体生产体系相似,这两种体系生产的纳米抗体具有成本低、污染少安全性高的特点,具有潜在的应用价值。

抗原特异的纳米抗体可以通过免疫库、天然库或合成库产生,其中免疫库的构建常用的纳米抗体开发技术。用纯化的靶抗原对羊驼进行免疫,免疫成功后在羊驼血液中提取包含成熟B细胞的淋巴细胞。抽提淋巴细胞的RNA并反转成cDNA文库,利用特殊设计的引物在cDNA文库中再次进行PCR扩增,得到特异的基因片段;随后将特异的基因片段拼接重组在噬菌体载体上,并转染大肠杆菌,最终完成纳米抗体基因文库的构建。


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